受賞区分：学会誌・学術雑誌による顕彰  受賞国：日本国

http://square.umin.ac.jp/pl-morph/pdf/170810_Hirase_papers.pdf

受賞国：ドイツ連邦共和国

https://www.cell.com/pictureshow/biology-of-sex

受賞区分：国内学会・会議・シンポジウム等の賞  受賞国：日本国

http://bsj.or.jp/jpn/members/information/622.php

受賞区分：国内学会・会議・シンポジウム等の賞  受賞国：日本国

受賞区分：国内学会・会議・シンポジウム等の賞  受賞国：日本国

https://www.nacos.com/jsb/07/07prize_2010.html

受賞区分：国内学会・会議・シンポジウム等の賞  受賞国：日本国

担当区分：筆頭著者,　最終著者,　責任著者   記述言語：日本語   出版者・発行元：公益社団法人 日本植物学会  

DOI： 10.24480/bsj-review.14a4.00239

CiNii Research

記述言語：日本語   出版者・発行元：公益社団法人 日本植物学会  

DOI： 10.24480/bsj-review.14a1.00236

CiNii Research

担当区分：最終著者,　責任著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Quantitative Plant Biology  

Single-cell analysis is important to understand how individual cells work and respond at the cell population level. Experimental single-cell isolation techniques, including dilution, fluorescence-activated cell sorting, microfluidics, and micromanipulation, have been developed in recent decades. However, such applications typically require large cell populations and skilled professionals. Additionally, these methods are unsuitable for sequential analysis before and after cell isolation. In this study, we propose a method for target cell isolation using automated infrared laser-mediated disruption of pollen grains in pollen populations. Germination of the target pollen was observed at the same location as that before laser irradiation, and germinated pollen grains were enriched in the cell population. Pollination of laser-irradiated bulk pollen populations also showed that the target pollen preferentially germinated on the stigma. This method is expected to facilitate physiological analyses of target cells at the single-cell level and effectively produce seeds derived from target pollen.

DOI： 10.1017/qpb.2022.24

Open Access

Web of Science

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その他リンク： https://www.microscope.healthcare.nikon.com/ja_JP/resources/application-notes/automatic-isolation-of-pollen-using-nis-elements-general-analysis-ga-and-jobs-imaging-workflow-tools

担当区分：最終著者,　責任著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Journal of Visualized Experiments  

The recently developed clearing technology that eliminates refractive index mismatches and diminishes auto-fluorescent material has made it possible to observe plant tissues in three dimensions (3D) while preserving their internal structures. In rice (Oryza sativa L.), a monocot model plant and a globally important crop, clearing technology has been reported in organs that are relatively easy to observe, such as the roots and leaves. Applications of clearing technology in shoot apical meristem (SAM) and stems have also been reported, but only to a limited degree because of the poor penetration of the clearing solution (CS) in these tissues. The limited efficiency of the clearing solutions in these tissues has been attributed to auto-fluorescence, thickening, and hardening of the tissues in the stem as the vascular bundles and epidermis develop and layering of the SAM with water-repellent leaves. The present protocol reports the optimization of a clearing approach for continuous and 3D observation of gene expression from the SAM/young panicle to the base of the shoots during development. Fixed tissue samples expressing a fluorescent protein reporter were trimmed into sections using a vibrating micro-slicer. When an appropriate thickness was achieved, the CS was applied. By specifically targeting the central tissue, the penetration rate and uniformity of the CS increased, and the time required to make the tissue transparent decreased. Additionally, clearing of the trimmed sections enabled the observation of the internal structure of the whole shoot from a macro perspective. This method has potential applications in deep imaging of tissues of other plant species that are difficult to clear.

DOI： 10.3791/64116

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記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Journal of Visualized Experiments  

It is challenging to directly observe the internal structure of multi-layered and opaque plant specimens, without dissection, under a microscope. In addition, autofluorescence attributed to chlorophyll hampers the observation of fluorescent proteins in plants. For a long time, various clearing reagents have been used to make plants transparent. However, conventional clearing reagents diminish fluorescent signals; therefore, it has not been possible to observe the cellular and intracellular structures with fluorescent proteins. Reagents were developed that can clear plant tissues by removing chlorophyll while maintaining fluorescent protein stability. A detailed protocol is provided here for the optical clearing of plant tissues using clearing reagents, ClearSee (CS) or ClearSeeAlpha (CSA). The preparation of cleared plant tissues involves three steps: fixation, washing, and clearing. Fixation is a crucial step in maintaining the cellular structures and intracellular stability of fluorescent proteins. The incubation time for clearing depends on the tissue type and species. In Arabidopsis thaliana, the time required for clearing with CS was 4 days for leaves and roots, 7 days for seedlings, and 1 month for pistils. CS also required a relatively short time of 4 days to make the gametophytic leaves of Physcomitrium patens transparent. In contrast, pistils in tobacco and torenia produced brown pigment due to oxidation during CS treatment. CSA reduced the brown pigment by preventing oxidation and could make tobacco and torenia pistils transparent, although it took a relatively long time (1 or 2 months). CS and CSA were also compatible with staining using chemical dyes, such as DAPI (4',6-diamidino-2-phenylindole) and Hoechst 33342 for DNA and Calcofluor White, SR2200, and Direct Red 23 for the cell wall. This method can be useful for whole-plant imaging to reveal intact morphology, developmental processes, plant-microbe interactions, and nematode infections.

DOI： 10.3791/63428

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担当区分：最終著者,　責任著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Plant Reproduction  

Key message: Biolistic delivery into pollen. Abstract: In recent years, genome editing techniques, such as the CRISPR/Cas9 system, have been highlighted as a new approach to plant breeding. Agrobacterium-mediated transformation has been widely utilized to generate transgenic plants by introducing plasmid DNA containing CRISPR/Cas9 into plant cells. However, this method has general limitations, such as the limited host range of Agrobacterium and difficulties in tissue culture, including callus induction and regeneration. To avoid these issues, we developed a method to genetically modify germ cells without the need for Agrobacterium-mediated transfection and tissue culture using tobacco as a model. In this study, plasmid DNA containing sequences of Cas9, guide RNA, and fluorescent reporter was introduced into pollen using a biolistic delivery system. Based on the transient expression of fluorescent reporters, the Arabidopsis UBQ10 promoter was found to be the most suitable promoter for driving the expression of the delivered gene in pollen tubes. We also evaluated the delivery efficiency in male germ cells in the pollen by expression of the introduced fluorescent marker. Mutations were detected in the target gene in the genomic DNA extracted from CRISPR/Cas9-introduced pollen tubes, but were not detected in the negative control. Bombarded pollen germinated pollen tubes and delivered their contents into the ovules in vivo. Although it is necessary to improve biolistic delivery efficiency and establish a method for the screening of genome-modified seeds, our findings provide important insights for the detection and production of genome-modified seeds by pollen biolistic delivery.

DOI： 10.1007/s00497-021-00418-z

Open Access

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その他リンク： https://link.springer.com/article/10.1007/s00497-021-00418-z/fulltext.html

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Plant and Cell Physiology  

To understand how the body of plants is made, it is essential to observe the morphology, structure and arrangement of constituent cells. However, the opaque nature of the plant body makes it difficult to observe the internal structures directly under a microscope. To overcome this problem, we developed a reagent, ClearSee, that makes plants transparent, allowing direct observation of the inside of a plant body without inflicting damage on it, e.g. through physical cutting. However, because ClearSee is not effective in making some plant species and tissues transparent, in this study, we further improved its composition to prevent oxidation, and have developed ClearSeeAlpha, which can be applied to a broader range of plant species and tissues. Sodium sulfite, one of the reductants, prevented brown pigmentation due to oxidation during clearing treatment. Using ClearSeeAlpha, we show that it is possible to obtain clear chrysanthemum leaves, tobacco and Torenia pistils and fertilized Arabidopsis thaliana fruits - tissues that have hitherto been challenging to clear. Moreover, we show that the fluorescence intensity of purified fluorescent proteins emitting light of various colors was unaffected in the ClearSeeAlpha solution; only the fluorescence intensity of TagRFP was reduced by about half. ClearSeeAlpha should be useful in the discovery and analysis of biological phenomena occurring deep inside the plant tissues.

DOI： 10.1093/pcp/pcab033

Open Access

Web of Science

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その他リンク： https://academic.oup.com/pcp/article-pdf/62/8/1302/41119229/pcab033.pdf

担当区分：筆頭著者,　最終著者,　責任著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Plant and Cell Physiology  

Live and deep imaging play a significant role in the physiological and biological study of organisms. Two-photon excitation microscopy (2PEM), also known as multiphoton excitation microscopy, is a fluorescent imaging technique that allows deep imaging of living tissues. Two-photon lasers use near-infrared (NIR) pulse lasers that are less invasive and permit deep tissue penetration. In this review, recent advances in two-photon imaging and their applications in plant studies are discussed. Compared to confocal microscopy, NIR 2PEM exhibits reduced plant-specific autofluorescence, thereby achieving greater depth and high-resolution imaging in plant tissues. Fluorescent proteins with long emission wavelengths, such as orange-red fluorescent proteins, are particularly suitable for two-photon live imaging in plants. Furthermore, deep- and high-resolution imaging was achieved using plant-specific clearing methods. In addition to imaging, optical cell manipulations can be performed using femtosecond pulsed lasers at the single cell or organelle level. Optical surgery and manipulation can reveal cellular communication during development. Advances in in vivo imaging using 2PEM will greatly benefit biological studies in plant sciences.

DOI： 10.1093/pcp/pcab062

Open Access

Web of Science

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その他リンク： https://academic.oup.com/pcp/article-pdf/62/8/1224/41119175/pcab062.pdf

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Current Biology  

Ovule development in Arabidopsis thaliana involves pattern formation, which ensures that ovules are regularly arranged in the pistils to reduce competition for nutrients and space. Mechanisms underlying pattern formation in plants, such as phyllotaxis, flower morphogenesis, or lateral root initiation, have been extensively studied, and genes controlling the initiation of ovules have been identified. However, the fundamental patterning mechanism that determines the spacing of ovule anlagen within the placenta remained unexplored. Using natural variation analysis combined with quantitative trait locus analysis, we found that the spacing of ovules in the developing gynoecium and fruits is controlled by two secreted peptides, EPFL2 and EPFL9 (also known as Stomagen), and their receptors from the ERECTA (ER) family that act from the carpel wall and the placental tissue. We found that a signaling pathway controlled by EPFL9 acting from the carpel wall through the LRR-receptor kinases ER, ERL1, and ERL2 promotes fruit growth. Regular spacing of ovules depends on EPFL2 expression in the carpel wall and in the inter-ovule spaces, where it acts through ERL1 and ERL2. Loss of EPFL2 signaling results in shorter gynoecia and fruits and irregular spacing of ovules or even ovule twinning. We propose that the EPFL2 signaling module evolved to control the initiation and regular, equidistant spacing of ovule primordia, which may serve to minimize competition between seeds or facilitate equal resource allocation. Together, EPFL2 and EPFL9 help to coordinate ovule patterning and thereby seed number with gynoecium and fruit growth through a set of shared receptors.

DOI： 10.1016/j.cub.2020.08.050

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記述言語：日本語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：日本育種学会  

DOI： 10.1270/jsbbr.22.w03

CiNii Research

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Journal of Cell Science  

Pollen tube guidance is a unique navigating system that is required for the successful sexual reproduction of plants. As plant sperm cells are non-motile and egg cells are embedded deep inside the female tissues, a pollen tube delivers the two sperm cells that it contains by growing towards the ovule, in which the egg cell resides. Pollen tube growth towards the ovule is precisely controlled and divided into two stages, preovular and ovular guidance. In this Cell Science at a Glance article and accompanying poster, we provide a comprehensive overview of pollen tube guidance and highlight some of the attractant peptides used during ovular guidance. We further discuss the precise one-to-one guidance system that exists in multi-ovular plants. The pollen tube-blocking system, which is mediated by male-female crosstalk communication, to avoid attraction of multiple pollen tubes, is also reviewed.

DOI： 10.1242/jcs.208447

Web of Science

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CiNii Research

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Methods in Molecular Biology  

In plants, transcription factors often act as cell-to-cell trafficking mobile proteins and specify cell fate. Thus, to visualize spatiotemporal expression pattern and localization of transcription factors are essential to understand their functions during development. Several protocols have been developed to observe fluorescent protein. However, plant-specific autofluorescent compounds and various tissue components with different refractive indexes interfere with detection of fluorescent signals of your interest. Furthermore, cell fate specification often occurs in a limited number of cells covered by lateral/layers of organs. To overcome those issues, the plant clearing method, ClearSee, was recently developed for high-resolution imaging inside tissues by making background transparent. In this chapter, we provide three-dimensional imaging of fluorescent-protein-fused transcription factors by two-photon excitation microscopy in Arabidopsis and rice. Complex cell patterning with gene expression could be observed from any direction three-dimensionally. This method could be applicable to visualize any protein of your interest or it can readily be adapted in various other plants.

DOI： 10.1007/978-1-4939-8657-6_15

Web of Science

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記述言語：日本語  

担当区分：最終著者   記述言語：日本語   出版者・発行元：日本植物形態学会  

<p>蛍光タンパク質を用いることにより，一細胞レベルだけではなく，オルガネラ，あるいは一分子レベルでの蛍光観察が可能となってきている．しかしながら，植物には，不透明なからだ，内部に気相を含む器官構造，クロロフィルを初めとする自家蛍光物質という，多くの障害が存在する．そのため，切片などを作製することなく，外部から直接，植物の内部形態を蛍光観察することは困難であった．近年，内部を均一な溶液で満たし，またクロロフィルを除去することで，からだを透明にし，丸ごと植物組織を蛍光観察する透明化技術が開発されてきた．本総説では，各種透明化技術の長所・短所を紹介し，実際に透明化技術を用いて蛍光観察する上で注意する点について解説する．</p>

DOI： 10.5685/plmorphol.29.81

CiNii Research

記述言語：日本語   出版者・発行元：日本植物形態学会  

<p>卓上型走査型電子顕微鏡によるシロイヌナズナめしべの観察像 めしべの片側の子房壁を取り除いて，キーエンスVHX-2000 およびVHX-D510 により撮影．</p>

DOI： 10.5685/plmorphol.29.0

CiNii Research

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：英語  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1242/dev.127613

PubMed

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1007/s00709-014-0754-5

PubMed

担当区分：筆頭著者   記述言語：日本語  

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1111/tpj.12461

PubMed

記述言語：英語  

担当区分：筆頭著者   記述言語：日本語  

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：日本語  

記述言語：英語  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1093/pcp/pcq165

PubMed

担当区分：筆頭著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1073/pnas.1003124107

PubMed

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1093/pcp/pcn124

PubMed

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1093/pcp/pcn128

PubMed

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

担当区分：筆頭著者   記述言語：英語  

記述言語：英語  

記述言語：日本語 著書種別：画像

担当区分：筆頭著者   記述言語：日本語  

<p>卓上型走査型電子顕微鏡によるシロイヌナズナめしべの観察像 めしべの片側の子房壁を取り除いて，キーエンスVHX-2000 およびVHX-D510 により撮影．</p>

DOI： 10.5685/plmorphol.29.0

開催年月日： 2024年9月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2024年9月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2024年9月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2024年9月

会議種別：口頭発表（招待・特別）  

開催年月日： 2024年3月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2024年3月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2024年3月

記述言語：日本語   会議種別：公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等  

開催地：基礎生物学研究所  

開催年月日： 2024年3月

会議種別：公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等  

開催年月日： 2023年9月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2023年9月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2023年9月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2023年9月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2023年3月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2023年3月

会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

開催年月日： 2022年12月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2022年12月

会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

開催年月日： 2022年10月

会議種別：公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等  

開催年月日： 2022年9月

会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

開催年月日： 2022年9月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2022年9月

会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

開催年月日： 2022年9月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2022年6月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

開催年月日： 2021年12月

開催年月日： 2021年10月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2021年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催地：弘前大学  

開催年月日： 2021年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：東京都立大学  

開催年月日： 2021年9月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

開催地：筑波大学  

開催年月日： 2021年3月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

開催年月日： 2021年3月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：島根大学  

開催年月日： 2021年1月

記述言語：日本語   会議種別：公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等  

開催年月日： 2020年9月

記述言語：日本語   会議種別：公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等  

開催年月日： 2020年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2020年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2020年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2020年6月

記述言語：日本語   会議種別：公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等  

開催年月日： 2020年2月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

国名：日本国  

開催年月日： 2019年10月

記述言語：英語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2019年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2019年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2019年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2019年9月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

国名：日本国  

開催年月日： 2019年3月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2019年3月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

国名：日本国  

開催年月日： 2019年2月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

国名：日本国  

開催年月日： 2018年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2018年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2018年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2018年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2018年6月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2017年12月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2017年12月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

国名：日本国  

開催年月日： 2017年11月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

国名：日本国  

開催年月日： 2017年3月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2017年2月

会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

開催年月日： 2016年9月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

国名：日本国  

開催年月日： 2016年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2016年6月

会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2016年3月

会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2015年9月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

国名：日本国  

開催年月日： 2015年9月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

国名：日本国  

開催年月日： 2015年2月

記述言語：英語  

国名：日本国  

開催年月日： 2014年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2014年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2014年7月

記述言語：英語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

国名：日本国  

開催年月日： 2014年7月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：ポルトガル共和国  

開催年月日： 2014年1月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2013年9月

記述言語：日本語   会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

国名：日本国  

開催年月日： 2013年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2013年8月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2013年6月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：オーストラリア連邦  

開催年月日： 2013年5月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2012年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2012年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2012年5月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2012年3月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2011年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2011年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2010年9月

記述言語：日本語  

国名：日本国  

開催年月日： 2010年3月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2010年3月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2010年3月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2009年12月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2009年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2008年10月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2008年7月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：ドイツ連邦共和国  

開催年月日： 2007年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2007年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2007年3月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2005年10月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

作品分類：芸術活動   発表場所：日本植物学会第79回大会  

添付ファイル： ロゴマーク ユキツバキ（日本植物学会第79回大会）.pdf

作品分類：芸術活動   発表場所：科学技術の美パネル展  

添付ファイル： 生きている花粉管の花火（科学技術の美パネル展） .pdf

出願日：2019年4月

公開番号：2020-171262  公開日：2020年10月

出願国：国内   取得国：国内

出願人：国立大学法人名古屋大学

出願番号：特願2019-076650  出願日：2019年4月

公開番号：特開2020-171262  公開日：2020年10月

特許番号/登録番号：特許7334898  登録日：2023年8月 

出願人：国立大学法人名古屋大学

出願番号：特願2018-79316  出願日：2018年4月

公開番号：2019-180373  公開日：2019年10月

特許番号/登録番号：特許第6614622号  登録日：2019年11月  発行日：2019年12月

出願国：国内  

対象： 幼稚園以下,　小学生

種別：セミナー・ワークショップ

添付ファイル： 211001_591e5814.jpg

最先端の科学が明らかにする“新しい進化の物語”を、圧巻の映像美で描く大型シリーズ。第１集は、陸の王者、植物。「おとなしくて鈍感な生き物」のイメージを覆す、驚異的な能力の数々。植物がまるで“おしゃべり”するかのようにコミュニケーションする様子を、世界初の映像で紹介！さらに、多様な命が暮らす森の地下には“支え合いの世界”が広がっていた！特殊撮影と最先端のＶＦＸ技術で、植物の驚きの新世界を描き尽くす。

執筆者：本人以外 

執筆者：本人以外 

執筆者：本人以外 

執筆者：本人以外 

種別：大会・シンポジウム等