受賞国：日本国

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.26508/lsa.202201657

PubMed

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1038/s41477-022-01331-7

その他リンク： https://www.nature.com/articles/s41477-022-01331-7

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1007/s10265-022-01406-8

PubMed

その他リンク： https://link.springer.com/article/10.1007/s10265-022-01406-8/fulltext.html

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1038/s41598-022-13547-w

その他リンク： https://www.nature.com/articles/s41598-022-13547-w

掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Cold Spring Harbor Laboratory  

DOI： 10.1101/2022.04.28.489799

掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Public Library of Science (PLoS)  

The tobacco BY-2 cell line has been used widely as a model system in plant cell biology. BY-2 cells are nearly transparent, which facilitates cell imaging using fluorescent markers. As cultured cells are drifted in the medium, therefore, it was difficult to observe them for a long period. Hence, we developed a microfluidic device that traps BY-2 cells and fixes their positions to allow monitoring the physiological activity of cells. The device contains 112 trap zones, with parallel slots connected in series at three levels in the flow channel. BY-2 cells were cultured for 7 days and filtered using a sieve and a cell strainer before use to isolate short cell filaments consisting of only a few cells. The isolated cells were introduced into the flow channel, resulting in entrapment of cell filaments at 25 out of 112 trap zones (22.3%). The cell numbers increased through cell division from 1 to 4 days after trapping with a peak of mitotic index on day 2. Recovery experiments of fluorescent proteins after photobleaching confirmed cell survival and permeability of plasmodesmata. Thus, this microfluidic device and one-dimensional plant cell samples allowed us to observe cell activity in real time under controllable conditions.

DOI： 10.1371/journal.pone.0266982

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： doi.org/10.3791/63428

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.3791/63428

出版者・発行元：Cold Spring Harbor Laboratory  

Abstract

Plasmodesmata are unique channel structures in plants that link the fluid cytoplasm between adjacent cells. Plants have evolved these microchannels to allow trafficking of nutritious substances as well as signaling molecules for intercellular communication. However, tracking the behavior of plasmodesmata in real time is difficult because they are located inside tissues. Hence, we developed a microfluidic device that traps cultured cells and fixes their positions to allow testing of plasmodesmata permeability. The device has 112 tandemly aligned trap zones in the flow channel. Cells of the tobacco line BY-2 were cultured for 7 days and filtered using a sieve and a cell strainer before use to isolate short cell clusters consisting of only a few cells. The isolated cells were introduced into the flow channel, resulting in entrapment of cell clusters at 25 out of 112 trap zones (22.3%). Plasmodesmata permeability was tested from 1 to 4 days after trapping the cells. During this period, the cell numbers increased through cell division. Fluorescence recovery after photobleaching experiments using a transgenic marker line expressing nuclear-localized H2B-GFP demonstrated that cell-to-cell movement of H2B-GFP protein occurred within 200 min of photobleaching. The transport of H2B-GFP protein was not observed when sodium chloride, a compound known to cause plasmodesmata closure, was present in the microfluid channel. Thus, this microfluidic device and one-dimensional plant cell samples allowed us to observe plasmodesmata behavior in real time under controllable conditions.

DOI： 10.1101/2021.02.19.431975

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Cambridge University Press (CUP)  

<title>Abstract</title>
The zygote is the first cell of a multicellular organism. In most angiosperms, the zygote divides asymmetrically to produce an embryo-precursor apical cell and a supporting basal cell. Zygotic division should properly segregate symbiotic organelles, because they cannot be synthesized <italic>de novo</italic>. In this study, we revealed the real-time dynamics of the principle source of ATP biogenesis, mitochondria, in <italic>Arabidopsis thaliana</italic> zygotes using live-cell observations and image quantifications. In the zygote, the mitochondria formed the extended structure associated with the longitudinal array of actin filaments (F-actins) and were polarly distributed along the apical–basal axis. The mitochondria were then temporally fragmented during zygotic division, and the resulting apical cells inherited mitochondria at higher concentration compared to the basal cells. Further observation of postembryonic organs showed that these mitochondrial behaviours are characteristic of the zygote. Overall, our results showed that the zygote has spatiotemporal regulation that unequally distributes the mitochondria.

DOI： 10.1017/qpb.2020.4

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Elsevier BV  

Ovule development in Arabidopsis thaliana involves pattern formation, which ensures that ovules are regularly arranged in the pistils to reduce competition for nutrients and space. Mechanisms underlying pattern formation in plants, such as phyllotaxis, flower morphogenesis, or lateral root initiation, have been extensively studied, and genes controlling the initiation of ovules have been identified. However, the fundamental patterning mechanism that determines the spacing of ovule anlagen within the placenta remained unexplored. Using natural variation analysis combined with quantitative trait locus analysis, we found that the spacing of ovules in the developing gynoecium and fruits is controlled by two secreted peptides, EPFL2 and EPFL9 (also known as Stomagen), and their receptors from the ERECTA (ER) family that act from the carpel wall and the placental tissue. We found that a signaling pathway controlled by EPFL9 acting from the carpel wall through the LRR-receptor kinases ER, ERL1, and ERL2 promotes fruit growth. Regular spacing of ovules depends on EPFL2 expression in the carpel wall and in the inter-ovule spaces, where it acts through ERL1 and ERL2. Loss of EPFL2 signaling results in shorter gynoecia and fruits and irregular spacing of ovules or even ovule twinning. We propose that the EPFL2 signaling module evolved to control the initiation and regular, equidistant spacing of ovule primordia, which may serve to minimize competition between seeds or facilitate equal resource allocation. Together, EPFL2 and EPFL9 help to coordinate ovule patterning and thereby seed number with gynoecium and fruit growth through a set of shared receptors.

DOI： 10.1016/j.cub.2020.08.050

PubMed

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：Frontiers Media SA  

During the life cycle of flowering plants, nuclear fusion, or karyogamy, occurs three times: once during female gametogenesis, when the two polar nuclei fuse in the central cell, and twice during double fertilization. In Arabidopsis thaliana, nuclear fusion events during sexual reproduction proceed without the breakdown of the nuclear envelope, indicating that nuclear membrane fusion is essential for the completion of this process. Arabidopsis gamete expressed 1 (GEX1) is a membrane protein that is conserved among plant species. GEX1 shares homology with the yeast karyogamy protein Kar5, which is primarily expressed in the nuclear membrane. The GEX1 family represents a putative karyogamy factor. Herein, we show that GEX1 is required for the nuclear fusion events in Arabidopsis reproduction. GEX1-deficient mature female gametophytes were found to contain two unfused polar nuclei in close proximity within the central cell. Electron microscopy showed that the outer membrane of the polar nuclei was connected via the endoplasmic reticulum, whereas the inner membrane remained unfused. These results indicate that GEX1 is involved in polar nuclear membrane fusion following the fusion of the outer nuclear membrane. Furthermore, sperm nuclear fusion events were defective in the fertilized egg and central cell following plasmogamy in the fertilization of gex1-1 female gametophytes by gex1-1 pollen. An analysis of GEX1 localization in the female gametophyte using a transgenic line expressing GFP-tagged GEX1 driven by the GEX1 promoter showed that GEX1 is a nuclear membrane protein in the egg and central cell. Time-lapse live-cell imaging showed that in developing female gametophytes, the nuclear GFP-GEX1 signal was first detectable in the central cell shortly before the polar nuclei came in close contact, and then in the egg cell. Thus, we suggest that the GEX1-family proteins are nuclear membrane proteins involved in karyogamy in the reproduction of eukaryotes including flowering plants.

DOI： 10.3389/fpls.2020.548032

Web of Science

記述言語：英語  

In Arabidopsis, the ASYMMETRIC LEAVES2 (AS2) protein plays a key role in the formation of flat symmetric leaves via direct repression of the abaxial gene ETT/ARF3. AS2 encodes a plant-specific nuclear protein that contains the AS2/LOB domain, which includes a zinc-finger (ZF) motif that is conserved in the AS2/LOB family. We have shown that AS2 binds to the coding DNA of ETT/ARF3, which requires the ZF motif. AS2 is co-localized with AS1 in perinucleolar bodies (AS2 bodies). To identify the amino acid signals in AS2 required for formation of AS2 bodies and function(s) in leaf formation, we constructed recombinant DNAs that encoded mutant AS2 proteins fused to yellow fluorescent protein. We examined the subcellular localization of these proteins in cells of cotyledons and leaf primordia of transgenic plants and cultured cells. The amino acid signals essential for formation of AS2 bodies were located within and adjacent to the ZF motif. Mutant AS2 that failed to form AS2 bodies also failed to rescue the as2-1 mutation. Our results suggest the importance of the formation of AS2 bodies and the nature of interactions of AS2 with its target DNA and nucleolar factors including NUCLEOLIN1. The partial overlap of AS2 bodies with perinucleolar chromocenters with condensed ribosomal RNA genes implies a correlation between AS2 bodies and the chromatin state. Patterns of AS2 bodies in cells during interphase and mitosis in leaf primordia were distinct from those in cultured cells, suggesting that the formation and distribution of AS2 bodies are developmentally modulated in plants.

DOI： 10.1111/tpj.14579

PubMed

担当区分：最終著者,　責任著者   記述言語：英語   掲載種別：論文集(書籍)内論文  

Plant embryogenesis begins with fertilization and ends with the generation of the basic body plan of the future plant. Despite its importance, the dynamics of flowering plant ontogeny have long been a mystery, because the embryo develops deep in the maternal tissue. Recently, an embryonic live-cell imaging system was established in Arabidopsis thaliana by developing an in vitro ovule cultivation method and utilizing two-photon excitation microscopy (2PEM), which is suitable for deep imaging. This system enabled us to visualize intracellular dynamics during zygote polarization and monitor the cell division pattern during embryogenesis from the zygote until organ formation. In this chapter, we describe a method that allows for high-resolution imaging of cytoskeletal rearrangements in the zygote and long-term tracing of embryo patterning.

DOI： 10.1007/978-1-0716-0342-0_4

PubMed

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1073/pnas.1814160116

PubMed

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：SPRINGER WIEN  

Parasite infections cause dramatic anatomical and ultrastructural changes in host plants. Cyst nematodes are parasites that invade host roots and induce a specific feeding structure called a syncytium. A syncytium is a large multinucleate cell formed by cell wall dissolution-mediated cell fusion. The soybean cyst nematode (SCN), Heterodera glycines, is a major soybean pathogen. To investigate SCN infection and the syncytium structure, we established an in planta deep imaging system using a clearing solution ClearSee and two-photon excitation microscopy (2PEM). Using this system, we found that several cells were incorporated into the syncytium; the nuclei increased in size and the cell wall openings began to be visible at 2 days after inoculation (DAI). Moreover, at 14 DAI, in the syncytium developed in the cortex, there were thickened concave cell wall pillars that resembled "Parthenon pillars." In contrast, there were many thick board-like cell walls and rarely Parthenon pillars in the syncytium developed in the stele. We revealed that the syncytia were classified into two types based on the pattern of the cell wall structures, which appeared to be determined by the position of the syncytium inside roots. Our results provide new insights into the developmental process of syncytium induced by cyst nematode and a better understanding of the three-dimensional structure of the syncytium in host roots.

DOI： 10.1007/s00709-017-1105-0

Web of Science

担当区分：筆頭著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：JOURNAL OF VISUALIZED EXPERIMENTS  

In most flowering plants, the zygote and embryo are hidden deep in the mother tissue, and thus it has long been a mystery of how they develop dynamically; for example, how the zygote polarizes to establish the body axis and how the embryo specifies various cell fates during organ formation. This manuscript describes an in vitro ovule culture method to perform live-cell imaging of developing zygotes and embryos of Arabidopsis thaliana. The optimized cultivation medium allows zygotes or early embryos to grow into fertile plants. By combining it with a poly(dimethylsiloxane) (PDMS) micropillar array device, the ovule is held in the liquid medium in the same position. This fixation is crucial to observe the same ovule under a microscope for several days from the zygotic division to the late embryo stage. The resulting live-cell imaging can be used to monitor the real-time dynamics of zygote polarization, such as nuclear migration and cytoskeleton rearrangement, and also the cell division timing and cell fate specification during embryo patterning. Furthermore, this ovule cultivation system can be combined with inhibitor treatments to analyze the effects of various factors on embryo development, and with optical manipulations such as laser disruption to examine the role of cell-cell communication.

DOI： 10.3791/55975.

Web of Science

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：日本語  

DOI： 10.5685/plmorphol.29.81

J-GLOBAL

記述言語：日本語  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）   出版者・発行元：UNIV TOKYO CYTOLOGIA  

Nematode infection of plant roots is a paradigm of host parasite interactions. Although nematodes can be labeled with fluorescent dyes, migration of the worms into the deep regions of host roots makes them difficult to track. Here we report the use of two fluorescent dyes, FM4-64 and SYBR green I, to intensely label the soybean cyst nematode (SCN) Heterodera glycines for one week in host plants. Continuous monitoring of the labeled SCN juveniles was achieved with two-photon microscopy. Additionally, we developed a transient transformation system consisting of the non-model leguminous plant (fabaceous) roots, Astragalus sinicus and Agrobacterium rhizogenes to observe the cellular structures of the plant during SCN infection. By the combined use of fluorescent dyes and two-photon microscopy, clear images of infecting SCNs were obtained even in deep regions of A. sinicus roots. The fluorescent labeling described herein can also be used in detailed monitoring of the infection processes of other non-model nematodes, as well as the associated morphological changes in the host plant roots.

DOI： 10.1508/cytologia.82.251

Web of Science

掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

担当区分：筆頭著者   記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： in press

記述言語：英語  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1016/j.cell.2015.03.018

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1093/pcp/pcv031

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

Ca(2+) waves and oscillation are key signalling elements during the fertilization process of animals, and are involved, for example, in egg activation. In the unique double fertilization process in flowering plants, both the egg cell and the neighbouring central cell fuse with a sperm cell each. Here we succeeded in imaging cytosolic Ca(2+) in these two cells, and in the two synergid cells that accompany the gametes during semi-in vivo double fertilization. Following pollen tube discharge and plasmogamy, the egg and central cells displayed transient Ca(2+) spikes, but not oscillations. Only the events in the egg cell correlated with the plasmogamy. In contrast, the synergid cells displayed Ca(2+) oscillations on pollen tube arrival. The two synergid cells showed distinct Ca(2+) dynamics depending on their respective roles in tube reception. These Ca(2+) dynamics in the female gametophyte seem to represent highly specific signatures that coordinate successful double fertilization in the flowering plants.

DOI： 10.1038/ncomms5722.

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

DOI： 10.1016/j.snb.2013.09.060

記述言語：日本語  

担当区分：筆頭著者   記述言語：英語  

担当区分：筆頭著者   記述言語：英語  

Sexual reproduction ensures propagation of species and enhances genetic diversity within populations. In flowering plants, sexual reproduction requires complicated and multi-step cell-to-cell communications among male and female cells. However, the confined nature of plant reproduction processes, which occur in the female reproductive organs and several cell layers of the pistil, limits our ability to observe these events in vivo. In this review, we discuss recent live-cell imaging in in vitro systems and the optical manipulation techniques that are used to capture the dynamic mechanisms representing molecular and cellular communications in sexual plant reproduction.

DOI： 10.1111/dgd.12040

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

In flowering plants, double fertilization is normally accomplished by the first pollen tube, with the fertilized ovule subsequently inhibiting the attraction of a second pollen tube. However, the mechanism of second-pollen-tube avoidance remains unknown. We discovered that failure to fertilize either the egg cell or the central cell compromised second-pollen-tube avoidance in Arabidopsis thaliana. A similar disturbance was caused by disrupting the fertilization-independent seed (FIS) class polycomb-repressive complex 2 (FIS-PRC2), a central cell- and endosperm-specific chromatin-modifying complex for gene silencing. Therefore, the two female gametes have evolved their own signaling pathways. Intriguingly, second-pollen-tube attraction induced by half-successful fertilization allowed the ovules to complete double fertilization, producing a genetically distinct embryo and endosperm. We thus propose that each female gamete independently determines second-pollen-tube avoidance to maximize reproductive fitness in flowering plants.

DOI： 10.1016/j.devcel.2013.03.013.

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

担当区分：筆頭著者   記述言語：英語  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

担当区分：筆頭著者   記述言語：日本語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

担当区分：筆頭著者   記述言語：英語  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

記述言語：英語  

記述言語：英語   掲載種別：研究論文（学術雑誌）  

担当区分：筆頭著者   記述言語：英語  

記述言語：日本語   掲載種別：記事・総説・解説・論説等（学術雑誌）  

J-GLOBAL

J-GLOBAL

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：日本語   掲載種別：記事・総説・解説・論説等（商業誌、新聞、ウェブメディア）  

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：日本語   掲載種別：記事・総説・解説・論説等（その他）  

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：日本語   掲載種別：記事・総説・解説・論説等（学術雑誌）  

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：日本語   掲載種別：記事・総説・解説・論説等（商業誌、新聞、ウェブメディア）  

担当区分：筆頭著者,　責任著者   記述言語：日本語   掲載種別：記事・総説・解説・論説等（商業誌、新聞、ウェブメディア）  

担当区分：最終著者,　責任著者   記述言語：日本語   掲載種別：記事・総説・解説・論説等（学術雑誌）  

担当区分：筆頭著者   記述言語：日本語   掲載種別：記事・総説・解説・論説等（商業誌、新聞、ウェブメディア）  

記述言語：日本語   掲載種別：記事・総説・解説・論説等（商業誌、新聞、ウェブメディア）  

担当区分：筆頭著者   記述言語：英語   掲載種別：記事・総説・解説・論説等（学術雑誌）  

開催年月日： 2023年6月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2023年6月

会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

開催年月日： 2023年3月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2023年3月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2022年11月 - 2022年12月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2022年11月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2022年11月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2022年9月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2022年9月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2022年5月 - 2022年6月

記述言語：英語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

開催年月日： 2022年4月

記述言語：日本語   会議種別：公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等  

開催年月日： 2022年4月

記述言語：日本語   会議種別：公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等  

開催年月日： 2022年3月

記述言語：日本語   会議種別：公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等  

開催年月日： 2022年3月

記述言語：日本語   会議種別：公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等  

開催年月日： 2021年12月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2021年9月

会議種別：口頭発表（招待・特別）  

開催年月日： 2021年3月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2021年3月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2020年12月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2020年9月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2020年9月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2020年9月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2020年9月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2020年9月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2020年9月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2020年3月

会議種別：口頭発表（一般）  

開催年月日： 2019年9月

会議種別：ポスター発表  

開催年月日： 2018年3月

会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（指名）  

開催年月日： 2017年3月

会議種別：口頭発表（招待・特別）  

国名：日本国  

開催年月日： 2017年2月

会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2016年12月

国名：日本国  

開催年月日： 2016年11月

会議種別：口頭発表（招待・特別）  

国名：日本国  

開催年月日： 2016年9月

会議種別：口頭発表（招待・特別）  

国名：日本国  

開催年月日： 2016年9月

会議種別：口頭発表（招待・特別）  

国名：日本国  

開催年月日： 2016年3月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：アメリカ合衆国  

開催年月日： 2016年3月

記述言語：英語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

国名：日本国  

開催年月日： 2016年1月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

開催地：京都産業大学   国名：日本国  

開催年月日： 2015年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

開催地：朱鷺メッセ・新潟コンベンションセンター   国名：日本国  

開催年月日： 2015年8月

記述言語：英語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

国名：日本国  

開催年月日： 2014年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催地：明治大学生田キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2014年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：明治大学生田キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2014年9月

記述言語：英語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

国名：日本国  

開催年月日： 2014年7月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：ポルトガル共和国  

開催年月日： 2013年11月

記述言語：英語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

開催地：奈良先端科学技術大学院大学   国名：日本国  

開催年月日： 2013年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催地：北海道大学 高等教育推進機構   国名：日本国  

開催年月日： 2013年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：北海道大学札幌キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2013年6月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催地：静岡・KKR伊豆長岡千歳荘   国名：日本国  

開催年月日： 2013年2月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：オーストラリア連邦  

開催年月日： 2012年10月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

開催地：日本女子大学八十年館   国名：日本国  

開催年月日： 2012年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催地：兵庫県立大学書写キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2012年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：兵庫県立大学書写キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2012年3月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

開催地：京都産業大学   国名：日本国  

開催年月日： 2012年2月

記述言語：英語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

国名：オーストラリア連邦  

開催年月日： 2011年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催地：東京大学駒場キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2011年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：日本女子大学目白キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2011年6月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2010年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：中部大学春日井キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2010年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：中部大学春日井キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2010年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

開催地：中部大学春日井キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2009年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催地：山形大学小白川キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2009年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：山形大学小白川キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2008年12月

記述言語：英語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2008年11月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催地：奈良県社会教育センター　かつらぎ   国名：日本国  

開催年月日： 2008年1月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2008年1月

記述言語：英語   会議種別：口頭発表（一般）  

国名：日本国  

開催年月日： 2007年12月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：パシフィコ横浜・ヨコハマグランドインターコンチネンタルホテル   国名：日本国  

開催年月日： 2007年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催地：岡山大学理学部・津島キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2007年8月

記述言語：英語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

国名：ドイツ連邦共和国  

開催年月日： 2007年8月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：オランダ王国  

開催年月日： 2007年6月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：大阪大学吹田キャンパス・コンベンションセンター   国名：日本国  

開催年月日： 2006年11月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：千葉大学けやき会館   国名：日本国  

開催年月日： 2006年11月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：国立遺伝学研究所   国名：日本国  

開催年月日： 2006年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：熊本大学大学教育センター棟   国名：日本国  

開催年月日： 2006年9月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：熊本大学大学教育センター棟   国名：日本国  

開催年月日： 2006年6月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：日本国  

開催年月日： 2005年12月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：ヤフードーム（福岡県福岡市）   国名：日本国  

開催年月日： 2005年7月

記述言語：日本語   会議種別：ポスター発表  

開催地：奈良県文化会館   国名：日本国  

開催年月日： 2005年3月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催地：新潟コンベンションセンター　朱鷺メッセ   国名：日本国  

開催年月日： 2004年9月

記述言語：日本語   会議種別：口頭発表（一般）  

開催地：名城大学天白キャンパス   国名：日本国  

開催年月日： 2004年5月

記述言語：英語   会議種別：ポスター発表  

国名：大韓民国  

会議種別：口頭発表（一般）  

会議種別：口頭発表（一般）  

記述言語：日本語  

記述言語：日本語  

会議種別：口頭発表（招待・特別）  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：口頭発表（一般）  

会議種別：口頭発表（招待・特別）  

記述言語：日本語  

記述言語：日本語  

記述言語：日本語  

記述言語：日本語  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：ポスター発表  

記述言語：日本語  

会議種別：口頭発表（一般）  

会議種別：シンポジウム・ワークショップ パネル（公募）  

記述言語：日本語  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：口頭発表（一般）  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：ポスター発表  

記述言語：英語   会議種別：口頭発表（招待・特別）  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：口頭発表（招待・特別）  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：ポスター発表  

会議種別：口頭発表（一般）